多肽的分离制备,如何上量？如何增大分离度?

反相HPLC应当是很好的分离小肽方法，用CH3CN或CH3OH：H2O（95：5）做流动相，看保留如何，若无保留，建议改用其他色谱方法进行分离。

关于多肽的分离，首先要知道它的分子量大小，然后选择不同类型的填料，如孔径的大小。我们先在分析柱（4.6mm内径）上做一下实验,找到很大的分离度,这一过程的难度是很大的,要不断地改变流动相和固定相,然后再线性或非线性放大到制备,放大的倍数按分析柱的实验结果。分离后可以通过冷冻干燥得到固体。

还可以考虑离子交换来分l离。

反相色谱分离纯化后，怎样除去流动相产品中的TFA和***或其他杂质？

TFA是反相色谱分离中常用的添加剂。可以用冻干的办法去除，国外许多文献是这样报道的。还可以试试离子交换、凝胶层析、甚至透析和超滤，其中，离子交换层析效果比较好，还可以起到浓缩样品的作用。

首先，冻干的办法应该可以几乎完全地除去TFA和***，***实验前尽量先检测一下冻干品中的残留量，只要不超过允许范围，这种办法是很简单、有效的。

其次，如果你的***的分装量不大的话(<100ug)，建议你用离子交换层析，尽量装一个小一点儿的柱子，让含盐洗脱峰的蛋白浓度达10mg/mL以上，稀释后完全符合试验要求。如果用分子筛，考虑稀释，尽量也先过一个离子交换。此外可以试试疏水层析。如果产品是碱的话，可能会形成TFA盐，这样通过上述方法就无法除去。一般可以用碱水洗，然后将产品萃取出来。或者在里面加入一定量的盐酸，再干燥后形成盐酸盐。

工业制备色谱

工业色谱又称制备色谱。利少{J组分的差速迁移而实现I.业规模混合物分离的方法它包括一个流动相(被分离的气相或液相)和一个固定相。两相在色谱柱r}，进行接触，在色谱柱‘l，流动相沿固定相流动，由」几混合物中各组分被固定相滞流程度不同，它们随流动相移动的速度就不同，因而可使各组分.4.相分离。根据流动相的不}.可，可分为}L相色谱与液相色谱两类。根据固定相的类型，可分为吸附色谱、分配色iH离子交换色谱、亲和色潜‘排I}}L色谱五类。上业色谱可分离选择性系数非常接近的组分，它适用于热敏N}物质的分离，对制备高纯物质特别有效

***液相色谱

***液相色谱，又称为“近代柱色谱”，是色谱法的一个重要分支。其所使用的固定相由小颗粒组成，以增加表面积，提高分离速率，因此它被称为***液相色谱。其原理与柱色谱相似。流动相携带混合物的组分以不同的速度通过色谱柱，其通过的速率取决于组分对流动相和固定相的相对亲和力。通过不同的检测器检测样品中的各组分，如紫外可见光检测器、蒸发光散射检测器或示差折光检测器等。大分子（如蛋白质、脂肪）、小分子（如单胺类）以及化学成分相似的物质（如单胺类、类固醇）都可以用***液相色谱分析。***液相色谱，应用范围广，应用于法医、食品、临床、环境和生物技术等领域。