细胞老化的表现：细胞折光性变差，镜下可见细胞“变薄”，做转染实验时，细胞死率会较高。但培养液不会发生迅速变黄的现象，仍清亮。（但如果是***污染的话，一般会出现培养液的迅速变黄，混浊，镜下可见大量繁殖的***；若是支原体污染的话，细胞也会失去正常形态，会有细胞的死）。细胞的贴壁性减弱，开始有细胞漂浮于培养液中。结合BI生产的基础培养基，MinimalEssentialMedium是基本的培养基,设计之初是为了培养HeLa细胞以及部分哺乳类的成纤维细胞。MEM含有12种必需氨基酸、谷氨酰胺和8种***，适合多种细胞单层生长。以MEM为基础，Stanner利用EarlesBalancedSalts和非必需胺基酸(NEAA)进一步配制成MEM-Alpha培养基，可广泛用于哺乳动物细胞的培养。如何避免细胞抱团？细胞生长密度不要太高，70%－80％就好（细胞刚刚基本成单层细胞，没有出现成层生长），这样细胞抱团的几率就大大减少了。如果细胞已经长成集落，可先将细胞低密度传代，第二天再消化传代，这样连续传三次，细胞抱团的就越来越小，这样几代过后，再按照常规消化方法和时间能将细胞逐渐传成单个的。用无钙镁平衡盐溶液洗涤细胞。多肽的稳定性研究，引起多肽不稳定的原因：（1）脱酰胺反应：在脱酰反应中，Asn/Gln残基水解形成Asp/Glu。非酶催化的脱酰胺反应的进行。在Asn-Gly-结构中的酰胺基团更易水解，位于分子表面的酰胺基团也比分子内部的酰胺基团易水解。（2）氧化：多肽溶液易氧化的主要原因有两种，一是溶液中有过氧化物的污染，二是多肽的自发氧化。在所有的氨基酸残基中，Met、Cys和His、Trp、Tyr等易氧化。氧分压、温度和缓冲溶液对氧化也都有影响。)