实验动物的除毛一、实验动物的除毛在动物实验中，被毛有时会影响实验操作与观察，因此必须除去。除去被毛的方法有剪毛、拔毛、剃毛和脱毛等。(一)剪毛法：剪毛法是将动物固定后，先用蘸有水的纱布把被毛浸湿，再用剪毛剪刀紧贴皮肤剪去被毛。不可用手提起被毛，以免剪破皮肤。剪下的毛应集中放在一容器内，防止到处飞扬。给狗、羊等动物采血或新牛放血制备常用此法。(二)拔毛法：拔毛法是用拇指和食指拔去被毛的方法。在兔耳缘静脉***或尾静脉***时常用此法。(三)剃毛法：剃毛法是用剃毛刀剃去动物被毛的方法。如动物被毛较长，先要用剪刀将其剪短，再用刷子蘸温肥皂水将剃毛部位浸透，然后再用剃毛刀除毛。本法适用于暴露***区。(四)脱毛法：脱毛法是用化学***脱去动物被毛的方法。首先将被毛剪短，然后用棉球蘸取脱毛剂，在所需部位涂一薄层，2～3分钟后用温水洗去脱落的被毛，用纱布擦干，再涂一层油脂即可。适用于狗等大动物的脱毛剂配方为：10g，生石灰15g，溶于100ml水中。适用于兔、鼠等动物的脱毛剂的配方为：1.3g,肥皂粉1g,淀粉7g,加适量水调成糊状；2.8g,淀粉7g，糖4g，甘油5g，硼砂1g,加水75ml；3.8g溶于100ml水中。实验动物的给法(一)***给药法1.皮射***时用左手拇指及食指轻轻捏起皮肤，右手持将针头刺入,固定后即可进行***。一般小鼠在背部或前肢腋下，大鼠在背部或侧下腹部；豚鼠在后大腿内侧、背部等脂肪少的部位；兔在背部或耳根部***；蛙可在脊背部淋巴囊***；狗多在大腿外侧***，拔针时，轻按片刻，防药液逸出。2.皮内***此法用于观察皮肤血管的通透性变化或观察皮内反应。如将一定量的性同位素溶液、颜料或致炎物质、等注入皮内，观察其消失速度和局部血液循环变化，作为皮肤血管通透性观察指标之一。方法是：将动物***部位的毛剪去，消毒后，用皮试针头紧贴皮肤皮层刺入皮内，然后使针头向上挑起并再稍刺入，即可***药液。***后可见皮肤表面鼓起一白色小皮丘。3.肌肉***当给动物***不溶于水而混悬于油或其他溶剂中的时,常采用肌肉***。肌肉***一般选用肌肉发达、无大血管经过的部位，多选臀部。***时针头要垂直快速刺入肌肉，如无回血现象即可***。给大、小鼠作肌肉***时，选大腿外侧肌肉进行***。4.腹腔***先将动物固定,腹部用酒精棉球擦试消毒，然后在左或右侧腹部将针头刺入皮下，沿皮下向前推进约0.5厘米，再使针头与皮肤呈45度角方向穿过腹肌刺入腹腔，此时有落空感，回抽无肠液、尿液后，缓缓推入药液。此法大小鼠用的较多。5.静脉***是将药液直接***于静脉管内，使其随着血液分布全身,迅速奏效。但排泄较快，作用时间较短。小鼠、大鼠的静脉***：常采用尾静脉***。鼠尾静脉共有3根，左右两侧和背侧各1根，两侧尾静脉比较容易固定，故常被采用。操作时，先将动物固定在暴露尾部的固定器内(可用烧杯、铁丝罩或粗试管等物代替),用75％酒精棉球反复擦试使血管扩张,并可使表皮角质软化，以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧，使静脉充盈,***时针头尽量采取与尾部平行的角度进针。实验动物大、小鼠的采血方法1、动物实验中剪尾采血：需血量少时可用此方法。将动物固定，显露尾部，将尾尘剪去约5mm，从尾根部向尾端部，血即从断端流出。若用二棉球涂擦尾部或事先将鼠尾浸在45℃水中数分钟，使尾部血管充盈，可采到较多的血，但注意二可致溶血。也可用锋利刀片割破尾动脉或尾静脉，让血液自行流出，采血后，消毒，止血。如将动物取血量可更多些。小鼠每次采血约0.1ml，大鼠约0.4ml。为了多次反复取血应尽量从鼠尾末端开始。2、动物实验中摘眼球采血：此法常用于鼠类大量采血。用左手固定动物，压迫眼球，尽量使眼球突出，右手用无钩弯镊子或弯止血钳迅速摘除眼球，立即将鼠倒置，头朝下，眼眶内很快流出血液。一般只适用于一次采血。大部动物采血后可以存活，可采另一侧眼球取血。大鼠后眼框静脉丛取血方法4、动物实验中颈静脉或颈动脉采血：将鼠，剪去一侧颈部外侧被毛，作颈静脉或颈动脉分离***，用即可抽出所需血量。也可插入导管，反复采血。5、断头采血：操作者左手拇指和食指握住鼠颈部，头朝下，用利剪在头颈间1/2处迅速剪动物头部，提起动物，血液即可流入准备好的容器中。6、心脏采血：将动物，使其仰位固定，剪去胸前区毛，消毒皮肤，在左侧第3—4肋间选择心博强处穿刺，血液借心脏跳动的力量进入。亦可在动物后，切开动物胸腔，直视心脏内抽血或剪破心脏，直接用、吸管等吸血。)