脂质体瞬时转染1、细胞H9C2(Hela)6孔板Hela1x10°/孔。2、转染前换上没有抗sheng素的DMEM+胎清(10%)。3、将质粒DNA(约2-4ul)2ul加入dorf管中+DMEM至50u1。4、脂质体5ul补培养基至50ul混匀静止5分钟(质粒与脂质体比例为1:2或1.5:2.5)。5、将含有脂质体的培养基与含质粒的混合总体积100ul室温放置30分钟。6、吸取混合物均匀加入每一个孔中。7、将6孔板放入培养箱中继续培养6小时后吸出培养基换上新配置的培养基DMEM6ml+胎清600u1+三抗300u1。8、培养24小时。小鼠成骨细胞和破骨细胞共培养模型的建立细胞之间的相互调控作用奠定基础.方法利用24h内新生小鼠颅骨和4~8周龄成年小鼠四肢长分别分离、培养成骨细胞和破骨细胞，流式细胞检测，采用间接接触的培养模式将接种了骨sui单核细胞的玻片或骨片置入提前24h接种了成骨细胞的培养皿中进行共培养.共培养-定时间后进行破骨细胞抗酒石酸酸性磷酸酶(tartrate-resistantacidphosphatase，TRAP染色鉴定和骨吸收功能检测，常州细胞，并进一步采用RT-PCR对破骨细胞标志酶***基质金属蛋白酶.9(MMP-9)、TRAP和***蛋白酶K(CathepsinK)的表达进行检测结果共培养5天后可观TRAP(+)多核细胞形成13天TRAP(+)多核细胞数目达到高峰;骨吸收陷窝在共培养7天后开始出现，随着培养时间的延长，细胞增殖，陷窝面积呈增加趋势;破骨细胞标志***TRAP在共培养3天时开始表达，而MMP-9和CathepsinK则在共培养5天后表达结论共培养体系中成骨细胞对破骨细胞调控作用显著诱导的破骨细胞具有噬骨能力，该共培养模型可用于成骨细胞和破骨细胞之间的相互调控作用研究.细胞转染实验目的学习和掌握外源***导入真核细胞的主要方法——脂质体介导的转染。了解外源***进入的一般性方法，观测外源蛋白的表达（绿色荧光蛋白），流式细胞，为染色准备实验材料。实验原理上图所示是脂质体介导转染的示意图，它显示了外源质粒进入细胞的一般过程。外源***进入细胞主要有四种方法：法、磷酸钙法和脂质体介导法和病毒介导法。法是在细胞上短时间暂时性的穿孔让外源质粒进入；磷酸钙法和脂质体法是利用不同的载体物质携带质粒通过直接穿膜或者膜融合的方法使得外源***进入细胞；病毒法是利用包装了外源***的病毒细胞的方法使得其进入细胞。但是由于法和磷酸钙法的实验条件控制较严、难度较大；病毒法的前期准备较复杂、而且可能对于细胞有较大影响；所以现在对于很多普通细胞系，一般的瞬时转染方法多采用脂质体法。利用脂质体转染法重要的就是防止其毒性，因此脂质体与质粒的比例，细胞密度以及转染的时间长短和培养基中的含量都是影响转染效率的重要问题，通过实验摸索的合适转染条件对于效率的提高有巨大的作用。细胞增殖-常州细胞-南京英瀚斯(查看)由南京英瀚斯生物科技有限公司提供。南京英瀚斯生物科技有限公司在技术合作这一领域倾注了诸多的热忱和热情，英瀚斯一直以客户为中心、为客户创造价值的理念、以品质、服务来赢得市场，衷心希望能与社会各界合作，共创成功，共创辉煌。相关业务欢迎垂询，联系人：戴经理。)